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    microRNAmiRNA引物设计及过程原理说明.docx

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    microRNAmiRNA引物设计及过程原理说明.docx

    1、microRNAmiRNA引物设计及过程原理说明microRNA(miRNA)引物设计及过程原理说明microRNAs的平均长度23nt左右,所以miRNA引物设计与常规引物设计存在很大差别,以下讲解一下整个miRNA引物设计的过程加上实验流程,以帮助大家对各方面的学习。首先,引物设计之前先介绍miRNA反转录合成cDNA的过程。我们拿经典颈环序列GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGAC作介绍。打开DNAstar软件的PrimerSelect;file打开下拉菜单;打开Enter New Primer;粘贴颈环序列;点击OK。颈环结构已经输入,下

    2、面查看颈环结构回形成的那些发夹结构。选择颈环结构(鼠标点一下);点击Report下拉菜单;选择Primer Hairpins。第一个发夹结构是实验所需的结构(dG=-20.4kc/m)。下面结合has-miR-122-5P合成cDNA的具体过程讲解has-miR-122-5P:UGGAGUGUGACAAUGGUGUUUGU将U转T,方便后面使用:TGGAGTGTGACAATGGTGTTTGTmiRNAs的颈环结构引物:是将miRNAs的3端后6位碱基反向互补添加到经典颈环结构的3端形成的结构。(自己根据后面图片想一下原因,加6个碱基为经验所授)has-miR-122-5P的后6位:GTTTGT

    3、has-miR-122-5P的后6位的反向互补序列:ACAAAC颈环引物序列:5-GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACACAAAC -3查看形成的发夹结构(方法前面有讲)看一下miRNA和颈环引物在一起会是怎么样子:在含反转录酶及适当的条件下,miRNA和其颈环引物将会合成cDNA链:GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACACAAACACCATTGTCACACTCCA查看cDNA结构:我们知道了cDNA的合成过程和序列,同时学习了miRNA的反转录过程。下面进入重头戏,教大家如何进行miRNA

    4、引物设计。首先如果你的前面实验是芯片的就在miRbase上再查看核对一遍,如果是测序实验的需要将miRNA的名字3p或5p及之前的部分复制到miRAN上查找完整序列。将得到的miRNA完整序列复制到一个excel表中,然后使用查找替换将U改为T(一定要记住改换,要不然primer5.0是不认U的)。为了后面引物设计方便,需要以miRNA序列构建引物,所以需要将miRNA的cDNA的反向互补序列找出。使用primer5.0。打开File下拉菜单;New;DNA Sequence。由于正规设计过程中不会先把cDNA序列找出来,所以直接操作过程为先将miRNA序列(U改T)输入,再输入颈环结构序列的

    5、反向互补序列。复制miRNA序列(U改T);点击primer5.0序列框,使用组合键“Ctrl+V”粘贴序列;选择正向序列。复制颈环结构序列;点击primer5.0序列框,使用组合键“Ctrl+V”粘贴序列;选择反向互补序列输入Reverse Complemented。到这一歩cDNA的反向互补序列已经输入完毕,下一歩是在primer5.0上进行引物设计。1.在序列前面输入9个N(这个是个人习惯,也有人是6个或以上的A,也有人是不输入就直接设计引物的),因为miRNA序列太短,很多时候不能设计出符合实验需要的miRNA,所以在设计正向引物时,一般需要加入3-6个碱基,最多时加入8个碱基,以满足

    6、正向引物的设计;2.点击Function框下的Primer,开始设计上下游引物;3.有经典颈环结构自然也就少不了常用的下游引物,一般使用CAGTGCAGGGTCCGAGGTAT;CGCAGGGTCCGAGGTATTC。同时还可以适当的在颈环序列中前后移动碱基设计下游引物;4.自动跳出的显示框中默认选择的是下游引物,正好符合先将常用下游引物输入的操作。下游引物相当比较固定,先输入下游引物对整个引物设计能够提高设计效率。5.点击框内的Edit Primers;选择所有引物序列;使用组合键“Ctrl+V”输入下游引物,输入方式为反向输入Reversed;点击OK;点击Analyze分析引物基本信息;

    7、点击Prime寻找引物在序列里结合部位;点击OK确定下游引物;6.点击上下游转换键(图示),开始设计上游引物;点击Edit Primers;7.去除前面的9个N;点击Analyze;点击prime;查看前面不添加序列时的上游引物状况如何。在这里的主要问题是Tm值太低,第二个问题是长度稍短。8.绝大多数情况下在前边添加的序列已GC为主,且在加GC序列时如果序列中间不以AT隔开则TM值上升比值高,同理加AT序列。不要出现GCGC、ATAT、GCCG、或连续4个不同的核苷酸,这些失误会造成引物评分的降低。个人喜欢加CGGGC、GCGGGC、A/TGCCCG等。9.例如加入ACGGGC(5端加入,别在

    8、3端);点击Analyze;点击prime;查看引物的长度和TM值差不多了就行。当然不是全行了,还要查看引物的自身颈环结构,自身引物配对,重要指标为dG(当然还有其他,哈哈)。下游引物不用看了,因为是经典嘛,呵呵。点击OK。10.再查看一下引物对之间的匹对情况,加以对上游引物的修改,或者更换下游引物。有必要点击比对框下的All查看所以的匹对情况,呵呵,希望你懂的。11.想做好实验的同学可以在DNAstar的PrimerSelect中进一步查看引物对的状况,因为这两款软件让人感觉还是有很大不同的。例如PrimerSelect中引物的Tm值会比primer5.0中底5.5度左右(自己可以试一下);同时PrimerSelect中对5端中的匹对情况比较放松(可以用经典下游引物CAGTGCAGGGTCCGAGGTAT看一下);primer5.0中有的dimer在更变或增减个被核苷酸时会不显示,需要PrimerSelect进一步查看完整的dimer。12.最后说一下,这个文本只是对最基本的miRNA引物设计进行说明,很多限制没有向大家说明,如果想做实验的可以联系生物公司让他们帮忙设计一下。或者找比较靠谱的师兄教一下。


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