抗氧化酶活性等测定方法.docx
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抗氧化酶活性等测定方法
叶绿体得提取
一、试剂配置
1、PBS提取液:
每L水依次加入MES(195.2×0。
05=9、76g)、山梨糖醇(0。
33×182。
2=60。
126g)、NaCl(0、010×58.5=0、585g)、MgCl(0.002×95=0、19g)、EDTA(292、25×0.002=0、5845g)、KH2PO4(200×0.0005=0、1g);使用时加入ASA—Na(198。
1×0、002=0、3962g);
2、悬浮液:
将PBS提取液中得MES换为238。
3×0.05=11、915g得HEPES(238、3×0。
05=11。
915g);
3、80%Percol:
80ml原液+20ml水;40%Percol:
40ml原液+60ml水;
实际配制:
PBS提取液2000ml(3个处理*2个品种*3个重复*20ml*3次=1080ml),
悬浮液100ml(3个处理*2个品种*3个重复*1ml*3次=54ml);
80%Percol200ml; 40%Percol200ml。
(3个处理*2个品种*3个重复*3ml*3次=162ml)
二、提取步骤
1、10g鲜样加20ml提取PBS(50mM MESPH6、1,含0、33M山梨糖醇,10mMNaCl,2mM MgCl2,2mM EDTA,0.5mMKH2PO4,2mM ASA—Na,ASA—Na使用前现配现加)
2、快速研磨,使叶片碎成绿豆粒大小,4层纱布过滤,去除残渣(注意过滤时不可用力挤压,以免叶绿体膜破碎)
3、滤液2000g3min,小心倒出上清液,将离心管放入离心机后,使离心机得加速很快上升到预定值(水平转头,加速度调到9),约经30s后很快使其下降停止,整个离心持续大约2—3min左右完成;
4、沉淀用1ml提取液漂洗表面悬浮物;
5、用1ml悬浮液(50mMHEPESpH7。
6,含0、33mM山梨糖醇,10mM NaCl,2mMMgCl2,2mMEDTA,0。
5 mMKH2PO4,2mM ASA-Na,ASA-Na使用前现配现加)将沉淀悬浮,在分散叶绿体时宜用毛笔轻轻刷,或者用手握住离心管在冰块之间搅动,使叶绿体由于震动分散开来,不要用棉球吸滤,以防被膜压破。
叶绿体悬浮时要浓点,含叶绿素2mg、ml-1以上,这样有利于保持活性。
6、2000g1min;
7、沉淀再用悬浮液悬浮;(悬浮液同5,可以不做)
8、用Percol试剂进行梯度离心(将3ml含有80%Percol(原液按100%算)铺在10ml离心管下层,再把3ml40%Percol铺在离心管中层,然后将1ml叶绿体悬浮液轻轻铺在离心管上层)1500g 2-3min(用水平离心头得离心机,离心机加速要缓慢上升,加速度调到1),下降也要缓慢下降,否则会破碎Percol得浓度梯度层得形成,取出会瞧到3层绿色带,最上层为破碎得叶绿体,沉在地层得为粗颗粒,40-80%得Percol之间得界面有一层绿色层为完整得叶绿体;
9、小心吸出,转移到悬浮介质中,使叶绿体浓度达到1mg.ml—1;(计算:
取叶绿体悬浮液0.1ml,加4.9ml 80%得丙酮,摇匀后于1000g离心2min,上清液置于1cm得比色杯,在625nm上比色,按照公式计算:
OD625nm×50/34.5=叶绿素mg/ml)
10、测定叶绿体得完整性,完整率达到85-95%;
参考:
TakedaK, Otaubo T,KondaN.Participationofhydrogenperoxideintheinactivation ofCalvin—cycleSHenzymein so2—furmugatedspinachleaves。
Plant andcellPhysiology,1982,23:
1009—1018。
取上述制备得完整叶绿体进行如下测定:
1、用50mM PBS(保护酶或其她测定项目得缓冲液)稀释2-5倍,用于测定SOD、POD、CAT、APX;
2、用冷丙酮稀释2倍,取0。
5ML提取液用于测定H2O2;(本试验中用0。
2 mol/LHClO4稀释)
3、用5%得TCA稀释2-5倍,取1。
5ml用于测定MDA;
4、用乙醇:
丙酮:
水=4。
5:
4。
5:
1稀释,用于测定叶绿素;
抗氧化酶(SOD、POD、CAT、APX)活性测定方法
一、超氧化物歧化酶(SOD)活性测定(氮蓝四唑光化还原法)
1、试剂得配制
(1)0.05mol/L磷酸缓冲液(PBS,pH7。
8):
A母液:
0。
2mol/L磷酸氢二钠溶液:
取Na2HPO4·12H2O(分子量358.14)71.7g;
B母液:
0.2mol/L磷酸二氢钠溶液:
取NaH2PO4·2H2O(分子量156.01)31.2g。
分别用蒸馏水定容到1000ml。
0、05mol/LPBS(pH7、8)得配制:
分别取A母液(Na2HPO4)228。
75ml,B母液(NaH2PO4)21.25ml,用蒸馏水定容至1000ml、
参考文献:
李合生主编:
植物生理生化实验原理与技术。
高等教育出版社,2000:
267~268。
(2)14。
5mM甲硫氨酸溶液:
取2、1637g Met用磷酸缓冲液(pH7。
8)定容至1000ml。
(3)30μM EDTA-Na2溶液:
取0。
001gEDTA-Na2用磷酸缓冲液定容至100ml、
(4)60μM核黄素溶液:
取0、0023g核黄素用磷酸缓冲液定容至100ml,避光保存。
(5)2。
25mM氮蓝四唑(NBT)溶液:
取0。
1840gNBT用PBS定容至100ml,避光保存。
(上述试剂先配好,放到4度冰箱,用之前临时按下面得方法配,然后放在4度冰箱中,不要在最上层,避免见光,第一组样品加好后拿出来加,加完后放回冰箱,第二组得样品加好后再拿出来加)
酶液制备:
取0。
2g(可视情况调整)样品(新鲜叶片或根系)洗净后置于预冷得研钵中,加入1。
6ml50mmol/L预冷得磷酸缓冲液(pH7、8)在冰浴上研磨成匀浆,转入离心管中在4℃、12000g下离心20min,上清液即为酶液。
2、酶活性测定
(1)反应混合液配制(以60个样为准):
分别取Met溶液162ml,EDTA-Na2溶液0.6ml(加得量与前面得浓度要核对),磷酸缓冲液5、4ml,NBT溶液6ml,核黄素溶液6ml,混合后摇匀;
SOD反应混合液:
3个处理*2个品种*3次重复*3ml*3次测定=162ml(实际配置200ml)
(2)分别取3ml反应混合液与30μl(可视情况调整,最好先做一个浓度梯度,瞧加多少合适,如果量太少,最好稀释后再加,这样精确)酶液于试管中(尽可能加到试管得底部,要靠着试管壁打下去先加酶液,后加反应液,加好后摇一摇,瞧瞧试管上就是不就是有雾气,最好拿纱布把试管下边擦一下,免得雾气挡住光线照过去);
(3)将试管置于光照培养箱中在4000lux光照下反应20min;(照光很重要,试管要选择相同规格得,因为不同得试管透光率就是不一样得,试管架不要选择遮光得,这个最好分组做,同时几组做相互之间会遮光,每一组一个重复,就就是每一组中都要有所有得处理,且都要有一个最大管,处理多得话,把根与叶分开做,最大管放在中间)
同时做两支对照管,其中1支试管取3ml反应混合液加入30μlPBS(不加酶液)照光后测定作为最大光还原管,另1支只加缓冲液置于暗中测定时用于调零。
(4)以不照光得对照管(只有缓冲液并置于暗处)调零后,避光测OD560(出现颜色即可测定)。
(5)酶活性计算:
SOD活性单位以抑制NBT光化还原50%所需酶量(测得样品值要在最大管得一半左右才合适,否则要调整酶量)为1个酶活单位(u)。
SOD总活性=[(Ack-AE)×V]/(1/2Ack×W×Vt)
SOD比活力=SOD总活性/蛋白质含量
SOD总活性以鲜重酶单位每克表示(u/gFW);比活力单位以酶单位每毫克蛋白表示;Ack为照光对照管得吸光度;AE为样品管得吸光度;V为样品液总体积(ml,1、6ml,加入PBS得体积);Vt为测定时得酶液用量(ml,30ul);W为样品鲜重(g,测定时应换算为叶绿体得质量mg);蛋白质含量单位为mg/g。
二、POD、CAT酶活性得测定
粗酶液制备同SOD。
1、过氧化物酶(POD)活性测定(愈创木酚法)
(1)试剂配制:
0、2mol/L磷酸缓冲液(pH6、0):
分别取A母液(Na2HPO4)123ml与B母液(NaH2PO4 ) 877ml混匀即为1000mlPBS(0。
2M,pH6、0);
(2)反应混合液配制(以60个样为准):
取200mlPBS(0。
2M,pH6、0),加入0.076ml液体(原液)愈创木酚(2-甲氧基酚)加热搅拌溶解,冷却后加入0。
112ml 30%得H2O2,混匀后保存于冰箱中备用。
POD反应混合液:
3个处理*2个品种*3次重复*3ml*3次测定=162ml(实际配置200ml,0.076ml,0、112ml)
(3)样品测定:
取3ml反应液并加入30μl酶液,以PBS为对照调零,而后测定OD470值(测定40秒)。
(边加样边测定,测定前等待5秒,动作要快,如果慢得话,要保证每个样品从加好样到开始记时得时间相差不大)
(4)酶活性计算:
以每minOD值变化(升高)0、01为1个酶活性单位(u)、
POD=(ΔA470×Vt)/(W×Vs×0、01×t) (u/gmin)
ΔA470:
为反应时间内吸光度得变化;W为样品鲜重(g);t为反应时间(min);Vt为提取酶液总体积(ml,(1.6ml);Vs为测定时取用酶液体积(ml,30ul)。
2、过氧化氢酶(CAT)活性测定
(1)试剂配制:
0、15mol/L磷酸缓冲液(pH7。
0):
取A母液(Na2HPO4)457、5ml与B母液(NaH2PO4)292。
5 ml混合后用蒸馏水定容至1000ml、
(2)反应液配制:
取200mlPBS(0、15M,pH7.0),加入0、3092ml30%得H2O2(原液)摇匀即可。
CAT反应液:
3个处理*2个品种*3次重复*3ml*3次测定=162ml(实际配置200ml,0、3092ml)
(3)样品测定:
取3ml反应液加入0.1ml(可视情况调整)酶液,以PBS为对照调零,测定OD240(紫外)(测定40s)。
(4)酶活性计算:
以每minOD值减少0。
01为1个酶活性单位(u)、
CAT=[ΔA240×Vt ]/(W×Vs×0。
01×t) (u/gmin)
ΔA240:
为反应时间内吸光度得变化;W为样品鲜重(g);t为反应时间(min);Vt为提取酶液总体积(ml,1、6ml);Vs为测定时取用酶液体积(ml,0。
1ml)。
三、抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性得测定(缓冲液为K)ﻩ
1、试剂配制(按50个样计算):
(1)0。
05 mol/LK2HPO4-KH2PO4缓冲液(pH7。
0)得配制:
(A)K2HPO4·3H2O:
228。
22×0、05×0.61=6.9607g
(B)KH2PO4:
136。
09×0。
05×0。
39=2、6538g,以上两者混合起来用去离子水定容到1L、
(2)0、1mMEDTA-Na2:
取0、01861g EDTA-Na2用PBS溶液定容到500 ml(372、24g/M×0.1mM×500ml=0、01861g);
(3)5mMAsA:
取0。
044g抗坏血酸用PBS溶液定容到50ml(现用现配,176.13g/M5mM×50ml=0.044g);
(4)20mMH2O2:
取0.2ml,30%H2O2用去离子水稀释到100ml(30%H2O2为550g×30%/(34、01g/M×0、5L)=9、703M)、
实际配置
0、1mMEDTA-Na2:
3个处理*2个品种*3次重复*1、7ml*3次测定=91、8ml;(实际配置250 ml,0。
009305g)
5mM得AsA:
3个处理*2个品种*3次重复*0。
1ml*3次测定=5。
4ml;(实际配置50ml,0。
044g)
20mMH2O2:
3个处理*2个品种*3次重复*0、1ml*3次测定=5。
4ml;(实际配置50 ml,0。
1ml)
2、酶活性得测定(以2ml体系测定)
(1)取0、10ml酶液(可视情况调整),加入1。
70ml 含0。
1 mMEDTA-Na2得PBS(0、05mol/L,pH7。
0),再加入0。
10 ml5 mM得AsA,最后加入0、10ml20mMH2O2,立即在20℃下测定D290(紫外)值在40s内(测定时间内变化大可测定得时间短点,否则长点)得变化,计算单位时间内AsA减少量与酶活性(室温下测定,缓冲液调零)。
计算公式:
△OD/△t×Vr×VT
A×d×Vt×W
△OD为反应时间内吸光度得变化(40秒吸光度-0秒吸光度);△t为反应时间(40秒);Vr为反应液体积(2mL);VT提取液体积(1。
6mL);A为消光系数(2、8mM-1.cm-1);d为比色杯厚度(1cm);Vt测定液体积(0。
1mL);W为样品鲜重(0。
2g)。
四、超氧阴离子自由基(O2。
-)产生速率得测定(羟胺氧化法)
1、试剂得配制
(1)1mM盐酸羟胺溶液:
称取0.02085g盐酸羟胺用蒸馏水定容至300ml;
(2)17mM对氨基苯磺酸溶液:
称取1.1776g对氨基苯磺酸用少量冰醋酸水溶液(冰醋酸:
水=1:
3配制)加热溶解后定容至400ml;
(3)7mMα-萘胺溶液:
称取0。
4008gα-萘胺用冰醋酸水溶液(冰醋酸:
水=3:
1配制)定容至400ml、
实际配置
PBS(0、05M,pH7.8):
3个处理*2个品种*3次重复*0、5ml*3次测定=27ml;(实际配置100ml)
1mM盐酸羟胺溶液:
3个处理*2个品种*3次重复*1ml*3次测定=54ml;(实际配置100ml,0.00695g)
17mM对氨基苯磺酸:
3个处理*2个品种*3次重复*1ml*3次测定=54ml;(实际配置100ml,0。
2944g)7mMα-萘胺溶液:
3个处理*2个品种*3次重复*1ml*3次测定=54ml;(实际配置100 ml,0。
1004g)
2、O2。
-含量得测定
(1)样品液提取方法同SOD测定;
(2)取0。
5ml提取液(酶液)(可视情况调整用量)中加入0.5mlPBS(0。
05M,pH7。
8),1ml1mM盐酸羟胺溶液后摇匀、
(3)在25℃下保温1小时;
(4)依次先加入1ml17mM对氨基苯磺酸,再加入1ml 7mM α-萘胺,混合后快速摇匀;
(5)在25℃下保温20min后在3000×g下离心3min后马上进行测定(或置于冰箱待测);
(6)以对照管调零(用水调零),取粉红色水相液测定OD530值(测定);
(7)O2。
—含量得计算:
由测得得OD530,查NO2-标准曲线得到[NO2-];根据羟胺与O2、—得反应式:
NH2OH+2O2.-+H+ NO2—+H2O2+H2O计算[O2、-],即[NO2-]×2=[O2、—];再根据样品与羟胺反应得时间与样品中得蛋白质含量,求得O2.-产生速率(以nmolmin-1mg—1蛋白表示,也可以nmol min-1g-1鲜重表示)。
O2。
—产生速率=(C×V)/(t×W)(nmolmin-1g—1鲜重)
C为标准曲线上查得得浓度(umol/L);V为测定时所取提取液用量(叶绿体稀释后得体积);t为反应时间(60min);W为样品鲜重(叶绿体实际质量g)
参考文献:
王爱国,罗广华.植物生理学通讯,1990,(6):
55~57
五、可溶性蛋白含量得测定(考马斯亮蓝染色法)
1、试剂得配制
(1)考马斯亮蓝溶液配制:
称取100 mg考马斯亮蓝,溶于50ml90%乙醇中,加入100ml 85%(W/V)得磷酸,再用蒸馏水定容到1L。
在过夜后过滤并贮于棕色瓶中,常温下可在暗中保存一个月、
(2)100μg/ml牛血清蛋白(BSA)标准溶液:
称取25mgBSA加水溶解后定容至100ml,再从中吸取40ml用蒸馏水定容至100ml(也可取10mg BSA定容至100ml即为100μg/ml标准BSA溶液)、
实际配置
0、05M,pH7。
8磷酸缓冲液:
3个处理*2个品种*3次重复*0.08ml*3次测定=0、3456ml;(实际配置100ml,)
考马斯亮蓝溶液:
3个处理*2个品种*3次重复*2。
9ml*3次测定=156。
6ml;(实际配置200ml,20mg)
2、样品可溶性蛋白含量得测定
(1)样品可溶性蛋白含量测定:
取20μl提取液(酶液)加入80μl,0.05M,pH7、8磷酸缓冲液(即稀释成0.1ml提取液),再加入2。
9ml考马斯亮蓝溶液,反应2min后测OD595(以100μl缓冲液加2。
9ml考马斯亮蓝为对照调零)。
(2)蛋白质含量计算:
可溶性蛋白质含量(mg/g)=(C×VT)/(W×VS×1000)
C为标准曲线查得得蛋白质含量(μg);VT为提取液总体积(稀释后得体积ml);VS为测定时所用提取液体积(ml,20μl);W为样品鲜重(g)、
过氧化氢(H2O2)含量得测定
一、试剂配制:
1、0。
2mol/LHClO4:
取10.05g HClO4溶解于0。
5L得水中;
2、4mol/LKOH:
取112gKOH溶解于0.5L得水中;
3、0、1mol/L,pH6、5得磷酸缓冲液:
Na2HPO4·12H2O5、6407g+NaH2PO4·2H2O5、3433g用去离子水定容到500ml;
4、显色液:
100mL、0。
1 mol/L、pH6。
5得磷酸缓冲液+25μL N,N-二甲基苯胺+10 mg4-氨基氨替吡啉;
5、过氧化物酶溶液(250U/mL)
二、测定步骤:
称取植株根与叶片组织各0。
5g,分别置于研钵中,加入1.6mL预冷至4℃得0。
2mol/L HClO4,冰浴匀浆,于10000×g离心5min(4℃),取上清液,加4mol/LKOH调pH值为7.5后,再于10 000×g离心5min(4℃),取上清液1mL,加0。
4mL显色液与0.1mL过氧化物酶溶液(250U/mL),用岛津UV-1601分光光度计测定波长550nm(可见)处光密度值得变化,H2O2含量以μmol/gFW表示、(用什么调零?
)
三、计算方法:
(要做标线?
)
参考:
过氧化氢(H2O2)含量得测定参照Uchida等(2002)方法并加以改进、
还原型谷胱苷肽GSH
2.试剂配制
(1)1mMGSH标准液10mL(现用现配):
称3。
0733mgGSH,加蒸馏水至10mL。
(不要)
(2)5%磺基水杨酸500mL:
25g溶于500mL水中。
(3)6mMDTNB:
称取0.118905gDTNB溶于50mLPBS(0。
1M,pH7、5)中。
(4)2mMNADPH:
18.1mg NADPH溶于10mLPBS中、
(5)1mMGSSG标准液10mL:
6.126mg GSSG加PBS至10mL、(不要)
实际配置
0.1MPBS(pH7.5):
3个处理*2个品种*3次重复*0.5ml*3次测定=27ml;(实际配置50ml)
6mM DTNB:
3个处理*2个品种*3次重复*0、2ml*3次测定=10、8ml;(实际配置50ml,实际用量0。
1189g)
2mMNADPH:
3个处理*2个品种*3次重复*0、1ml*3次测定=5.4ml;(实际配置50ml,实际用量18、1mg)
(1U)GRⅢ:
3个处理*2个品种*3次重复*0、1ml*3次测定=5。
4ml;(实际配置50ml,实际用量10ml)
5%磺基水杨酸:
3个处理*2个品种*3次重复*0。
01ml*3次测定=0。
54ml;(实际配置10ml)(实际用量0、5g/10ml)
0.5mM PBS:
3个处理*2个品种*3次重复*1.5ml*3次测定=81ml; (实际配置100ml)
乙醚(二乙醚):
3个处理*2个品种*3次重复*10ml*3次测定=540ml; (实际配置1000ml)
PBSBuffer 0。
5mM:
3个处理*2个品种*3次重复*1。
5ml*3次测定=81ml; (实际配置150ml)
2—乙烯吡啶:
3个处理*2个品种*3次重复*0、2ml*3次测定=10.8ml;(实际用量20ml)
乙醚:
3个处理*2个品种*3次重复*10ml*3次测定=540ml; (实际用量1000 ml)
1。
标线制作:
配制浓度为0,0.02mM,0.04mM,0.06mM,0.08mM,0.1mM,0.12mM得标准GSH溶液(吸取上述标准液各0.1mL)加入0。
5mL0.1M磷酸钠Buffer(pH7、5)(含5mMEDTA),0。
2mL6mMDTNB,0、1mL2mMNADPH,0。
1mL(1U)GRⅢ(谷胱甘肽还原酶)(sigma),从0。
1mLGSH启动反应,测定650s得A412(OD412),绘制标准曲线。
以PBS代替DTNB作空白。
3.GSH(还原型谷胱甘肽)及GSSH(氧化型谷胱甘肽)
(1)取1g新鲜叶片,加入10µL(可以取0.2g鲜样,加1、6ml提取液)5%磺基水杨酸,研磨后在14000g离心10分钟,取1mL上清液,加入1、5mL,0.5mM PBS(pH7、5)中,再用5mL乙醚(二乙醚)抽取二次(杂质会融到乙醚层中,而乙醚处于整个反应体系得上层,您直接用枪吸取上层乙醚丢弃即可,反复进行两次即为抽取两次),此提取液用于分析总谷胱苷肽含量。
各取1mL上清液,加入1.5mLPBSBuffer0。
5mM (pH7.5),0.2mL2—乙烯吡啶(原装试剂浓度)混合至乳胶状,在25℃反应1小时,再用5mL乙醚(原装试剂浓度)抽提2次,此提取液用于分析GSSG『GSSG-氧化型谷胱甘肽,GSH-还原型谷胱甘肽不能够直接测出,需测出氧化型与还原型谷胱甘肽含量,即总得谷胱甘肽含量,然后减去氧化型谷胱甘肽(GSSG)含量得到还原型谷胱甘肽含量(GSH))
(2)取反应混合液(0、5mL0.1MPBS(pH7、5)(内含5mMEDTA),0。
2mL 6mMDTNB,0、1mL2mMNADPH,0、1mL(1U)GRⅢ(sigma),由加入0。
1ml提取液开始反应,测OD412,在25℃下,反应650s(大约十分钟),分别计算总谷胱苷肽及GSH含量。
以不加DTNB,加相应剂量得PBS作空白。
GR(谷胱苷肽还原酶)测定
一、试剂配置
50mMPBS(K)(pH 7、0,含0、2mmolEDTA,与APX得相同):
K2HPO4·3H2O6.9607g+KH2PO42、6538g混合后定容到1L;然后加入292。
25×0、2=58.45gEDTA;
10mMGSSG(用水配):
612.63×10×0、001=6。
126g溶于1L水中;
2。
4mMNADPH(用PBS配):
833。
4×2.4×0。
001=2。
0g溶于1L水中。
实际配置
50mMPBS(K):
3个处理*2个品种*3次重复*1。
7ml*3次测定=91、8ml;(实际配置150 ml, 实际用量58。
45g*0.15=8.7675g)
10mMGSSG:
3个处理*2个品种*3次重复*0。
1ml*3次测定=5。
4ml; (实际配置50ml,实际用量
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- 氧化酶 活性 测定 方法
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