课程设计 2.docx
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课程设计 2.docx
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课程设计2
课程设计
题目:
薯叶粉质量与安全综合分析评价
姓名:
汪涛
班级:
食品101
指导教师:
韩豪
2013年11月
目录
1前言2
1实验目的和实验意义3
2实验材料3
3实验主要试剂和仪器3
4实验方案3
4.1感官指标3
4.1.1色泽4
4.1.2气味4
4.1.3复水性3
4.1.4颗粒感3
4.2理化指标3
4.3安全指标4
5实验方法4
5.1感官检验4
5.2理化检验4
5.3微生物检验4
6实验具体操作步骤4
6.1薯叶粉的感官评价方法5
6.2理化指标具体检测方法5
6.2.1水分的测定5
6.2.2酸不溶性灰分的测定5
6.2.3粗蛋白质的测定6
6.2.4总酸的测定6
6.2.5粗纤维的测定6
6.2.6细度的测定7
6.2.7酸不溶性灰分的测定7
6.3安全指标的具体测定方法7
6.3.1菌落总数7
6.3.2大肠杆菌8
6.3.3霉菌和酵母8
6.3.4致病菌9
6.3.5总砷11
6.3.6铅11
7实验中可能存在的问题及注意事项12
7.1可能存在的问题12
7.2注意事项12
8文献12
前言
红薯叶,即秋天红薯成熟后地上秧茎顶端的嫩叶。
测试表明,每百克鲜红薯叶含蛋白质2.28克、脂肪0.2克、糖4.1克、矿物质钾16毫克、铁2.3毫克、磷34毫克、胡萝卜素6.42毫克、维生素C0.32毫克。
将其与常见的蔬菜比较,矿物质与维生素的含量均属上乘,胡萝卜素含量甚至高过胡萝卜。
因此,亚洲蔬菜研究中心已将红薯叶列为高营养蔬菜品种,称其为“蔬菜皇后”。
研究发现,红薯叶有提高免疫力、止血、降糖、解毒、防治夜盲症等保健功能。
经常食用有预防便秘、保护视力的作用,还能保持皮肤细腻、延缓衰老。
近年在欧美、日本、香港等地掀起一股“红薯叶热”。
用红薯叶制作的食品,甚至摆上了酒店、饭馆的餐桌。
在我国,城市超市里见不到有红薯叶出售,农民收获红薯后将红薯叶,连同茎一起丢在地里,或用作喂牲畜的饲料,这是非常可惜的。
在此我们优化薯叶粉的技术加工:
(鲜薯叶、加工过程中及产品)通过对不同品种(品系)鲜薯叶各项理化指标的检测,完成不同品系薯叶组分和含量的测定,为开展下一步分析工作和产品初加工奠定理论基础;通过对产品加工工艺过程中各项理化指标的检测,确定最佳的工艺条件和工艺参数;通过对产品中各项理化指标的检测,制定产品质量评价标准。
薯叶粉系列产品开发—消费定位:
硬胶囊,片剂,(依材料而定)五彩粉系列产品,为烘焙行业提供高级辅料,将甘薯叶加工成甘薯叶粉,可作为食品添加剂和保健品辅料。
从而产生很好的经济效益和社会效益;同时也为广大产薯区的经济发展提供一条新的致富途径。
薯叶粉质量与安全综合分析与评价
(汪涛)
(陕西理工学院生物科学与工程学院食品专业101班,陕西汉中723000)
指导老师:
韩豪
1实验目的和意义
探讨薯叶粉的质量与安全,掌握其化学成分分析和营养学评价;为开拓薯叶粉系列产品奠定理论基础,确定消费定位满足市场对其做为食品添加剂,保健品和烘焙行业高级辅料的需求,从而产生很好的经济效益和社会效益;同时也为广大产薯区的经济发展提供一条新的致富途径。
2实验材料
西蒙一号粉,由陕西杨凌金薯种业有限公司提供薯叶,尚属研发阶段,产品未上市。
3实验试剂和仪器
标品:
去氢表雄酮,绿原酸,抗坏血酸,β-胡萝卜素,葡萄糖。
常规试剂:
浓硫酸,无水乙醇,95%乙醇,NaNO2,Al(NO3)3,NaOH,HCl,Zn粉,蒽酮,石油醚:
沸程30℃~60℃,甲醇,2,4-二硝基苯肼,草酸,硫脲等。
固体碘:
分析纯,重庆品誉化工公司;无水氯化钙:
分析纯,天津金汇太亚化学试剂有限公司。
仪器:
UV-2550型紫外-可见分光光度计:
日本岛津仪器公司;高效液相色谱仪:
美国WATERS公司;BSA224S型电子分析天平:
赛多利斯科学仪器有限公司;101-1型电热鼓风干燥箱、HH-S4型恒温水浴锅:
北京科伟永兴仪器有限公司; HN-2.5-10马佛炉:
佛山市海纳仪器有限公司等。
4实验方案
4.1感官指标
4.1.1色泽:
均匀一致,呈鲜亮色,与原薯叶颜色非常接近。
4.1.2气味:
有薯叶特有的浓郁香气,无异味。
4.1.3复水性:
复水均匀,略有成团现象。
4.1.4颗粒感:
细腻润滑,无粗粒感。
4.2理化指标
该样品理化指标检验项目严格按照国家标准要求进行检验,若在检验结果的范围以外为不合格,不得售出。
表1薯叶粉理化指标
项目
指标
薯叶粉
水分,%
≦10.0
灰分(以干基计),%
≦7.0
粗蛋白质(以干基计,N×6.25),%
≧50
酸不溶性灰分,%
≦0.8
总酸(以无水柠檬酸计),%
≦10
酸价(以脂肪计),%
≦4
粗脂肪(以干基计),%
≦2.0
粗纤维(以干基计),%
≦5.0
细度(通过直径0.154mm筛),%
≧95
4.3安全指标
该样品安全指标检验项目严格按照国家标准要求进行检验,若在检验结果的范围以外为不合格,不得售出。
薯叶粉安全指标见表2
薯叶粉安全指标
项目
指标
薯叶粉
菌落总数,(CPU/g)
≦30000
大肠菌群,(MPN/100g)
≦90
霉菌和酵母菌(CFU/g)
≦100
致病菌(沙门氏菌,志贺氏菌,金黄色葡萄球菌)
不得检出
总砷(以As计),㎎/㎏
≦0.5
铅(以Pb计),㎎/㎏
≦1.0
残留溶剂,㎎/㎏
≦500
5实验方法
5.1感官检验
5.1.1抽样:
按GB/T5009.1执行。
5.1.2色泽,气味的鉴定:
按GB/T5492执行。
5.2理化检验
5.2.1水分:
参考GB5009.3---2010,直接干燥法。
5.2.2酸不溶性灰分的测定:
参考GB/T8307---2002执行。
5.2.3粗蛋白质的测定:
参考GB/T5009.5---2003执行。
5.2.4总酸的测定:
按照GB/T12456---2008严格执行。
5.2.5粗脂肪的测定:
严格按照GB/T5009.6---2003执行。
5.2.6粗纤维的测定:
严格按照GB/T5009.6---2003执行。
5.2.7细度的测定:
参考GB5009.4—2010,食品中灰分的测定。
5.3安全检验
5.3.1无机砷:
按GB/T5009.11规定执行。
5.3.2铅:
按GB/T5009.12规定执行。
5.3.3黄曲霉毒素B1:
按GB/T5009.22规定执行。
5.3.4菌落总数:
按GB/T4789.2规定执行。
5.3.5大肠菌群:
按GB/T4789.3规定执行。
5.3.6霉菌与酵母:
按GB/T4789.15规定执行。
5.3.7沙门氏菌,志贺氏菌,金黄色葡萄杆菌:
分别按GB/T4789.4,GB/T4789.5,GB/T4789.10规定执行。
6实验具体操作步骤
6.1薯业粉的感官评价方法
打分法:
分值范围1~10,取整数(优9~10,良6~8,中3~5,差1~2)。
该样品感官指标检验项目严格按照国家标准要求进行检验,若在检验结果的范围以外为不合格,不得售出。
具体操作方法参考下表3:
薯业粉品质感官检验量化打分表
检验项目
打分标准
内涵诠释
1号
2号
3号
4号
色泽
优:
非常接近
良:
比较接近
中:
不太接近
差:
很不接近
鲜绿色
气味
优:
浓郁香气
良:
香气较浓
中:
香气较淡
差:
无香气,有异味
有薯叶粉特有的浓郁香气,无异味
复水性
优:
复水均匀
良:
复水后略有成团
中:
复水后成团
差:
成团现象严重
复水均匀,略有成团现象
颗粒感
优:
细腻润滑
良:
粉粒感
中:
沙粒感
差:
粗粒感
细腻润滑,无粗粒感
总分
6.2理化指标具体检测方法
6.2.1水分的测定
参考GB5009.3---2010,直接干燥法。
取洁净铝制或玻璃制的扁形称量瓶,置于101℃~105℃干燥箱中,瓶盖斜支于瓶边,加热1.0h,取出盖好,置干燥器内冷却0.5h,称量,并重复干燥至前后两次质量差不超过2mg,即为恒重。
将混合均匀的试样迅速磨细至颗粒小于2mm,不易研磨的样品应尽可能切碎,称取2g~10g试样(精确至0.0001g),放入此称量瓶中,试样厚度不超过5mm,如为疏松试样,厚度不超过10mm,加盖,精密称量后,置101℃~105℃干燥箱中,瓶盖斜支于瓶边,干燥2h~4h后,盖好取出,放入干燥器内冷却0.5h后称量。
然后再放入101℃~105℃干燥箱中干燥1h左右,取出,放入干燥器内冷却0.5h后再称量。
并重复以上操作至前后两次质量差不超过2mg,即为恒重。
注:
两次恒重值在最后计算中,取最后一次的称量值;在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的5%。
6.2.2酸不溶性灰分的测定
参考GB/T8307---2002执行。
用25mL10%盐酸溶液将总灰分分次洗人100mL烧杯中.盖上表面皿,在水浴上小心加热,至溶液由浑浊变为透明时,继续加热5min。
趁热用无灰滤纸过滤,用热蒸馏水少量反复洗涤烧杯和滤纸上的残留物,至洗液不呈酸性为止(约150ml)。
将滤纸连同残渣移人原柑竭内,在水浴上小心蒸去水分,移人高温炉内,以525℃士25'C灼烧至无炭粒为止〔约1h),待炉温降至300℃左右时,取出柑祸,于干燥器内冷却至室温,称景。
再移人高温炉内灼烧30min,冷却并称量,重复此操作,直至连续两次称量差不超过0.001g为止,以最小称量为准。
注:
如果符合重复性检验的要求,取两次测定的算术平均值作为结果(保留小数点后两位)。
同一样品的两次测定值之差,每100g试样不得超过0.02g。
6.2.3粗蛋白质的测定
参考GB/T5009.5---2003执行。
试样处理:
称取充分混匀的固体试样0.2g~2g、半固体试样2g~5g或液体试样10g~25g(约相当于30mg~40mg氮),精确至0.001g,移入干燥的100mL、250mL或500mL定氮瓶中,加入0.2g硫酸铜、6g硫酸钾及20mL硫酸,轻摇后于瓶口放一小漏斗,将瓶以45°角斜支于有小孔的石棉网上。
小心加热,待内容物全部炭化,泡沫完全停止后,加强火力,并保持瓶内液体微沸,至液体呈蓝绿色并澄清透明后,再继续加热0.5h~1h。
取下放冷,小心加入20mL水。
放冷后,移入100mL容量瓶中,并用少量水洗定氮瓶,洗液并入容量瓶中,再加水至刻度,混匀备用。
同时做试剂空白试验。
装好定氮蒸馏装置,向水蒸气发生器内装水至2/3处,加入数粒玻璃珠,加甲基红乙醇溶液数滴及数毫升硫酸,以保持水呈酸性,加热煮沸水蒸气发生器内的水并保持沸腾。
向接收瓶内加入10.0mL硼酸溶液及1滴~2滴混合指示液,并使冷凝管的下端插入液面下,根据试样中氮含量,准确吸取2.0mL~10.0mL试样处理液由小玻杯注入反应室,以10mL水洗涤小玻杯并使之流入反应室内,随后塞紧棒状玻塞。
将10.0mL氢氧化钠溶液倒入小玻杯,提起玻塞使其缓缓流入反应室,立即将玻塞盖紧,并加水于小玻杯以防漏气。
夹紧螺旋夹,开始蒸馏。
蒸馏10min后移动蒸馏液接收瓶,液面离开冷凝管下端,再蒸馏1min。
然后用少量水冲洗冷凝管下端外部,取下蒸馏液接收瓶。
以硫酸或盐酸标准滴定溶液滴定至终点,其中2份甲基红乙醇溶液与1份亚甲基蓝乙醇溶液指示剂,颜色由紫红色变成灰色,pH5.4;1份甲基红乙醇溶液与5份溴甲酚绿乙醇溶液指示剂,颜色由酒红色变成绿色,pH5.1。
同时作试剂空白。
称取固体试样0.2g~2g、半固体试样2g~5g或液体试样10g~25g(约相当于30mg~40mg氮),精确至0.001g。
按照仪器说明书的要求进行检测。
注:
以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示,蛋白质含量≥1g/100g时,结果保留三位有效数字;蛋白质含量<1g/100g时,结果保留两位有效数字。
6.2.4总酸的测定
按照GB/T12456---2008严格执行。
将样品充分混合均匀,置于密闭玻璃容器内。
总酸含量小于或等于4g/kg的试样将试样用快速滤纸过滤。
收集滤液,用于测定。
称取10g~50g试样,精确至0.001g,置于100mL烧杯中。
用约80℃煮沸过的水将烧杯中的内容物转移到250mL容量瓶中(总体积约150mL)。
置于沸水浴中煮沸30min(振动2~3次,使试样中的有机酸全部溶解于溶液中),取出,冷却至室温(约20℃),用煮沸过的水定容至250mL。
用快速滤纸过滤。
收集滤液,用于测定。
称取25.000g~50.000g试液,使之含0.035g~0.070g酸,置于250mL三角瓶中。
加40mL~60mL水及0.2mL1%酚酞指示剂用0.1mol/L氢氧化钠标准滴定溶液(如样品酸度较低,可用0.01mol/L或0.05mol/L氢氧化钠标准滴定溶液)滴定至微红色30s不退色。
记录消耗0.1mol/L氢氧化钠标准滴定溶液的体积的数值(V1)。
同一被测样品应测定两次。
空白实验:
用水代替试液。
按上述步骤操作。
记录消耗0.1mol/L氢氧化钠标准滴定溶液的体积的数值(V2)。
注:
计算结果表示到小数点后两位。
6.2.5粗脂肪的测定
严格按照GB/T5009.6---2003执行,称取5g试样,精确至0.001g,同时按照GB∕T5009.3规定方法测定试样中含水率,转移到250ml的高脚杯中,加入100ml盐酸溶液和数粒玻璃细珠,盖上表面皿,在电热板加热到微沸,水解1h,每10min摇动一次。
水解液在室温下冷却,加两g硅藻土。
用湿润的无脂双层中速滤纸过滤水解液,残渣至水洗至中性。
将残渣带滤纸放入电热鼓风干燥箱中,在80℃鼓风干燥,烘干后,小心将含有残渣的双层滤纸放入提取套管中,在100℃电热古风干燥中干燥30min。
取出套管并一小块脱脂棉覆盖。
将提取套管放入索氏提取器的抽提管内,在已恒重的烧瓶中注入150ml的石油醚,并立即和抽提管相连接,至于水浴上回流抽取5h~6h,控制每4min~6min虹吸一次,抽提完后。
取出滤纸包。
待烧瓶中石油醚挥发尽后取下烧瓶擦干,在100℃干燥箱中烘1h~2h,再在干燥器中冷却,称量,精确至0.0001g,重复以上操作直至前后两次质量差不超过0.0001g。
6.2.6粗纤维的测定
严格按照GB/T5009.6---2003规定执行。
称取试样约2.5g(准确至。
0.001g)于400ml一烧杯中,加人约100c的1.25%硫酸溶液,放在电炉加热(在1min内煮沸)。
准确微沸30min并随时补加热水,以保持原溶液的体积。
移去热源,将酸消化液倒人内铺50km尼龙布(4.2)的布氏漏斗中,缓缓抽气减压过滤,并用每次50ml沸蒸馏水洗涤残渣,直至中性,10min内完成。
用约100ml的1.25%氢氧化钠200m,将尼龙布上的残渣全部洗人原烧杯中,放在电炉上加热(在1min内煮沸)。
准确微沸30min,并随时补加热水,以保持原溶液的体积。
将碱消化液连同残渣倒人连接抽滤瓶的玻质砂芯钳垠(4-3)中,缓缓抽气减压过滤,用50ml,左右沸蒸馏水洗涤残渣,再用盐酸(5-3)洗涤一次,然后用沸蒸馏水洗涤数次,直至中性,最后用乙醇(5.4)洗涤二次,丙酮洗涤三次并抽滤至除去溶剂。
将上述增竭及残留物移人干燥箱(4,5)中,120℃烘4h。
放在干燥器(4-6)中冷却,称量(准确至0.001g).将己称量的薯叶粉,放在高温炉中.525℃士25℃灰化2h,待炉温降至300C左右时,取出于干燥器中冷却,称量(精确至0.001)。
注:
如果符合重复性的要求,取两次测定的算术平均值作为结果,结果保留小数点后一位。
同一样品的两次测定值之差,每100g试样不得超过0.5g。
6.2.6细度的测定
严格按照GB∕T5507---2008执行。
根据测定目的,选择符合要求的一定规格的筛子,用毛刷分别把每个筛子的筛娟上面,下面分别刷一遍,然后按大孔筛在下,最下层是筛底,最上层是筛盖的顺序安装。
从混匀的样品中称取试样50.0g,放入上层筛,同时放入清理盘,盖好筛盖,按要求固定好筛子,定是10min,打开电源开关,验粉筛自动筛理。
验粉筛停止后,用双手轻拍晒框的不同方位三次,取下各筛层,将每一筛层倾斜用毛刷把筛面上的残留物刷到表面皿中。
注:
称量上层残留物时,低于0.1g时忽略不计;合并称量由测定目的所规定的残留物。
6.3安全指标具体检测方法
6.3.1菌落总数
严格按照GB47892---2010执行。
称取25g样品置盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000r/min~10000r/min均质1min~2min,或放入盛有225mL稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1min~2min,制成1:
10的样品匀液。
用1mL无菌吸管或微量移液器吸取1:
10样品匀液1mL,沿管壁缓慢注于盛有9mL稀释液的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1:
100的样品匀液。
按以上操作程序,制备10倍系列稀释样品匀液。
每递增稀释一次,换用1次1mL无菌吸管或吸头。
根据对样品污染状况的估计,选择2个~3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释时,吸取1mL样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。
同时,分别吸取1mL空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。
及时将15mL~20mL冷却至46℃的平板计数琼脂培养基(可放置于46℃±1℃恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。
待琼脂凝固后,将平板翻转,36℃±1℃培养48h±2h。
水产品30℃±1℃培养72h±3h。
如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时,可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基(约4mL),凝固后翻转平板,按上述条件进行培养。
可用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。
菌落计数以菌落形成单(colony-formingunits,CFU)表示。
选取菌落数在30CFU~300CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。
低于30CFU的平板记录具体菌落数,大于300CFU的可记录为多不可计。
每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。
其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2,代表一个平板菌落数。
当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。
若所有稀释度的平板上菌落数均大于300CFU,则对稀释度最高的平板进行计数,其他平板可记录为多不可计,结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。
注:
若所有稀释度的平板菌落数均小于30CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算;若所有稀释度(包括液体样品原液)平板均无菌落生长,则以小于1乘以最低稀释倍数计算;若所有稀释度的平板菌落数均不在30CFU~300CFU之间,其中一部分小于30CFU或大于300CFU时,则以最接近30CFU或300CFU的平均菌落数乘以稀释倍数计算。
6.3.2大肠菌群
严格按照GB47893---2010执行。
称取25g样品,放入盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000r/min~10000r/min均质1min~2min,或放入盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1min~2min,制成1:
10的样品匀液。
样品匀液的pH值应在6.5~7.5之间,必要时分别用1mol/LNaOH或1mol/LHCl调节用1mL无菌吸管或微量移液器吸取1:
10样品匀液1mL,沿管壁缓缓注入9mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支1mL无菌吸管反复吹打,使其混合均匀,制成1:
100的样品匀液。
根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。
每递增稀释1次,换用1支1mL无菌吸管或吸头。
从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过15min。
每个样品,选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1mL(如接种量超过1mL,则用双料LST肉汤),36℃±1℃培养24h±2h,观察倒管内是否有气泡产生,24h±2h产气者进行复发酵试验,如未产气则继续培养至48h±2h,产气者进行复发酵试验。
未产气者为大肠菌群阴性。
用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环,移种于煌绿乳糖胆盐肉汤(BGLB)管中,36℃±1℃培养48h±2h,观察产气情况。
产气者,计为大肠菌群阳性管。
6.3.3霉菌和酵母
严格按GB/T4789.15规定执行。
按照固体和半固体样品:
称取25g样品至盛有225mL灭菌蒸馏水的锥形瓶中,充分振摇,即为1:
10稀释液。
或放入盛有225mL无菌蒸馏水的均质袋中,用拍击式均质器拍打2min,制成1:
10的样品匀液。
取1mL1:
10稀释液注入含有9mL无菌水的试管中,另换一支1mL无菌吸管反复吹吸,此液为1:
100稀释液。
按操作程序,制备10倍系列稀释样品匀液。
每递增稀释一次,换用1次1mL无菌吸管。
根据对样品污染状况的估计,选择2个~3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释的同时,每个稀释度分别吸取1mL样品匀液于2个无菌平皿内。
同时分别取1mL样品稀释液加入2个无菌平皿作空白对照。
及时将15mL~20mL冷却至46℃的马铃薯-葡萄糖-琼脂或孟加拉红培养基(可放置于46℃±1℃恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。
待琼脂凝固后,将平板倒置,28℃±1℃培养5d,观察并记录。
肉眼观察,必要时可用放大镜,记录各稀释倍数和相应的霉菌和酵母数。
以菌落形成单位(colonyformingunits,CFU)表示。
选取菌落数在10CFU~150CFU的平板,根据菌落形态分别计数霉菌和酵母数。
霉菌蔓延生长覆盖整个平板的可记录为多不可计。
菌落数应采用两个平板的平均数。
注:
计算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数计算;若所有平板上菌落数均大于150CFU,则对稀释度最高的平板进行计数,其他平板可记录为多不可计,结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算;若所有平板上菌落数均小于10CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。
6.3.4致病菌
严格按照GB4789---2005执行操作。
以无菌操作取检样25g(mL),加入装有灭菌225mL志贺氏菌增菌肉汤的均质杯,用旋转刀片式均质器以8000r/min~10
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