第一章光谱技术Word下载.docx
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由于蛋白质中肽键的存在,使其在200~225nm远紫外区波长也有光吸收,因此,蛋白质浓度在一定范围内,可用A215、A225值按下述公式测定。
Waddell经验公式:
蛋白质浓度(g/L)=144×
(A215-A225)
由于血清中不同类型蛋白质中酪氨酸和色氨酸含量不同,所以测定270~290nm波段紫外吸收也会因每个样品中蛋白质氨基酸组成的差异而有较大的变异,因而这个方法不能直接用于血清总蛋白的准确定量。
而在远紫外区(200~225nm)的光吸收主要由肽键所致,各种蛋白质具有相同的吸收系数,蛋白质浓度在120g/L仍符合Beer定律,因而Ressley等人建立起210nm波长下测定血清总蛋白的实用方法,其准确性与双缩脲法和Kjeldahl法间有较好的可比性。
【试剂】
1.0.15mol/LNaCl溶液精确称取NaCl8.766g溶于1000ml容量瓶中,用蒸馏水定容。
2.蛋白质标准溶液(1mg/ml)准确称取经校正后的牛血清白蛋白用0.15mol/LNaCl溶液配制成1mg/ml。
【操作步骤】
1.标准曲线法取8支试管,分别按表1-1加入试剂。
表1-1蛋白质标准曲线的制作
管号
试剂
1
2
3
4
5
6
7
8
蛋白质标准溶液(mg/ml)
-
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0
4.0
0.15mol/LNaCl溶液
3.5
蛋白质浓度(mg/ml)
0.125
0.250
0.375
0.500
0.625
0.750
1.00
混匀后,选用1cm的石英比色杯,在280nm处以第一管调节零点,分别测定各管吸光度值。
以光密度值为纵坐标,蛋白质浓度为横坐标,绘制出280nm处血清蛋白质标准曲线。
取1ml血清蛋白生理盐水稀释液(应使其浓度在蛋白质标准曲线范围内),加0.15mol/LNaCl溶液3ml,混匀后,按上述方法测定吸光度值,根据标准曲线查出蛋白质浓度。
2.Lowry-Kalckar公式法及Warburg-Christian公式法用0.15mol/LNaCl溶液将在血清作100倍稀释,选用光径为1cm的石英比色杯,分别在280nm和260nm波长两处测定溶液的吸光度(A),根据Lowry-Kalckar公式或Warburg-Christian公式计算此溶液的蛋白质浓度,再乘以稀释倍数100得到血清蛋白质的真实浓度。
3.Waddell公式法用0.15mol/LNaCl溶液将血清作1000倍稀释,选用光径为1cm石英比色杯,分别在215nm和225nm波长两处测定溶液的吸光度(A),根据Waddell公式计算此溶液的蛋白质浓度,再乘以稀释倍数1000得到血清蛋白质的真实浓度。
【注意事项】
1.270~290nm紫外法对测定蛋白质中酪氨酸和色氨酸含量差异较大的蛋白质溶液,有一定的误差。
2.本法需用高质量石英比色杯。
3.紫外分光光度计使用前需对其波长进行校正。
4.待测样品的蛋白质浓度应控制在15~25g/L范围内。
5.注意溶液pH值,这是由于蛋白质的紫外吸收峰会随pH的改变而变化。
6.受非蛋白质因素的干扰较重,除核酸外,游离的色氨酸、酪氨酸、尿酸、核苷酸、嘌呤、嘧啶和胆红素等均有干扰。
附:
紫外分光光度法测定核酸的浓度
嘌呤碱或嘧啶碱具有共轭双键,使核苷酸和核酸在紫外光区具有特征性的吸收光谱,最大吸收峰在26Onm。
比色杯光径1cm,波长260nm,1个吸光度值(lA)相当于50μg/ml双螺旋DNA;
401μg/ml单螺旋DNA或RNA;
20μg/ml寡核苷酸。
(一)DNA的浓度测定
1.取DNA溶液l0μl,加双蒸馏水600μl(即稀释61倍)。
2.用双蒸馏水调零,测定260nm和280nm的吸光度值(A260,A280)。
3.DNA浓度(μg/μl)=
4.DNA的纯度:
A260/A280的比值应大于1.7以上。
若样品中含有蛋白质(吸收峰在280nm)等杂质时,比值下降,应重新纯化。
有时需要测定A230,A260/A230的比值应大于2.0,如比值太小,说明样品中残存酚等有机杂质。
5.DNA溶液需经一定比例稀释,不可太浓。
否则,因溶液粘稠,加样器不易吸准。
(二)RNA的浓度测定
1.取RNA(溶于5g/LSDS溶液中)溶液l0μl,加入三蒸馏水500μl中(稀释51倍)。
2.将5g/LSDS用三蒸馏水作51倍稀释,用此液调零,测定RNA稀释液在260nm和280nm的吸光度(A260,A280)。
3.RNA浓度(μg/μl)=
4.RNA的纯度纯的RNA,A260/A280=2.0。
由于所用的标本不同,比值在1.7~2.0之间可以接受。
如低于此范围,往往是由于蛋白质的污染。
有时,RNA样品的A260/A280的比值可大于2.0。
低于此值则表示有异硫氰酸胍的污染。
应再经异戊醇沉淀,以除去小分子胍类的污染。
实验2血红蛋白及其衍生物的吸收光谱分析\
【原理】血红蛋白(hemoglobin,Hb)在不同条件下可以形成不同形式的衍生物。
血红蛋白溶液在空气中充分接触氧气可生成氧合血红蛋白(oxyhemoglobin,HbO2)。
Hb溶液中通入一氧化碳(CO),Hb与CO结合而成碳氧血红蛋白(carboxyhemoglobin,COHb),CO结合在Hb中的亚铁原子上,COHb呈樱桃红色,它的吸收光谱同HbO2非常接近。
高铁氰化钾[K3Fe(CN6)]在酸性或中性环境中,可使Hb中的亚铁离子失去一个电子,氧化成高铁离子而成为棕色的高铁血红蛋白(methemoglobin,MHb)。
由于这些物质的组成成分不同,其分子结构也不同,故具有各自的吸收光谱可资鉴别,其吸收光谱特征归纳于表1-2。
利用分光光度计测定不同波长的光线通过溶液时的吸光度,以波长为横坐标,相应的吸光度为纵坐标,绘制吸收光谱曲线。
表1-2血红蛋白及衍生物吸收光谱波长
吸收峰数
吸收峰波长(nm)
HbO2
578,540
COHb
572,535
MHb(pH6.4)
630,578,540,500
1.100g/L高铁氰化钾溶液称取高铁氰化钾1g置10ml容量瓶中,用蒸馏水定容,临用前配制。
2.0.15mol/LNaCl溶液精确称取NaCl8.766g溶于1000ml容量瓶中,用蒸馏水定容。
1.Hb溶液的制备静脉采血4~5ml,置于抗凝管中,各种抗凝剂均可使用,离心分离血浆,吸去血浆,将压积红细胞用生理盐水约作10倍稀释洗涤,混和,离心,吸出上清液,如此洗涤3~4次,除去血浆蛋白质。
将洗过的压积红细胞一份,加蒸馏水一份和氯仿半份,加塞,猛力振摇约5min,离心沉淀,除去细胞膜等残渣,分离Hb溶液。
Hb溶液分离后,测定其含量并调节至100g/L。
2.样品的制备
(1)HbO2溶液:
取Hb溶液4滴,加蒸馏水5ml。
(2)COHb溶液:
取Hb溶液3滴,加蒸馏水5ml,再加辛醇1滴,摇匀,用滴管通入CO2~3min呈樱桃红色。
(3)MHb溶液:
取Hb溶液3滴,加蒸馏水5ml,加新鲜配制的100g/L高铁氰化钾3滴,混匀,呈棕色,尽可能快比色。
3.测定分别取上述溶液3ml盛于比色杯内,以蒸馏水作空白,在波长470~650nm范围内,每隔20nm测吸光度一次,在接近吸收高峰时,每隔2nm测吸光度一次。
每测一次波长,必须重新校正零点,再测吸光度。
以入射光波长为横坐标,各相应的吸光度为纵坐标,分别绘出各物质的吸收光谱曲线。
1.必须对所用的分光光度计进行波长校正。
2.高铁氰化钾临用前配制,贮存于棕色瓶中。
3.如果没有CO发生器,可用煤气替代。
实验3荧光光度法测定β-N-乙酰氨基葡萄糖苷酶含量
荧光分析(fluorimetry)是一种分子发光分析技术,是利用某些物质受紫外光照射后发出特有的荧光,藉此对物质进行定性和定量分析。
用于荧光分析的仪器叫荧光计或荧光分光光度计。
【原理】物质中的分子吸收光能可由基态跃迁至激发态,当从激发态返回基态时,发出比原激发光频率较低的荧光。
激发光一般为紫外光,而发出的荧光多为可见光。
对于一种浓度较小的荧光物质,在一定浓度范围内,其荧光强度与溶液浓度呈线性关系,据此可测定荧光物质的含量。
在定量测定时,应选择荧光物质的最大激发波长(λex)和最大荧光波长(λem),这就需要先获知激发光谱和荧光光谱。
测定不同波长激发光时的荧光强度,以激发光波长为横坐标,荧光强度为纵坐标,所得曲线即表示激发光谱。
荧光强度最大时激发光波长称为最大激发波长;
与此类似,在最大激发波长时测定不同波长的荧光强度,以荧光波长为横坐标,荧光强度为纵坐标作图,所得曲线便是荧光光谱。
荧光底物4-甲基伞形酮N-乙酰-β-D-氨基葡萄糖苷,在β-N-乙酰氨基葡萄糖苷酶(NAG)作用下水解,释放出游离的4-甲基伞形酮(4-MU)。
后者在碱性条件下变构,受激发产生荧光。
根据荧光强度在标准曲线上查得4-MU含量,通过计算得出酶活力单位。
1.枸橼酸-磷酸盐缓冲液(枸橼酸3Ommol/L,磷酸盐47.5mmol/L,pH4.5,在1.0g/L牛血清白蛋白中):
(1)枸橼酸溶液:
称取12.6g枸橼酸·
H2O,以蒸馏水溶解并稀释至1L(6Ommol/L);
(2)磷酸氢二钠溶液:
称取无水Na2HPO413.5g,以蒸馏水溶解并稀释至1L(95mmol/L);
(3)取
(1)液50ml及
(2)液50ml混合,测pH应为4.5。
(4)取(3)液50ml,加入叠氮钠10mg及牛血清白蛋白50mg,溶解。
4℃保存可稳定数周,如长菌应弃去。
此为含牛血清白蛋白缓冲液。
2.2mmol/L底物缓冲液称取4-甲基伞形酮-N-乙酰-β-D-氨基葡萄糖苷(Mw=379.4)7.6mg,溶入10ml含牛血清白蛋白缓冲液中。
小量分装于具塞试管中,置-20℃保存可用数月,但不得反复冻融。
3.酶反应中止液(pH10.42)称取甘氨酸37.5g,溶于1L蒸馏水中,加入920ml0.5mol/L氢氧化钠,用0.5mol/L氢氧化钠调校pH至10.4。
4.300μmol/L4-甲基伞形酮标准液称取4-甲基伞形酮11mg,用中止液溶解并定容至250ml。
此为贮存液,置棕色瓶4℃保存至多稳定10天。
【操作】
1.先将血清用不含牛血清白蛋白(BSA)的缓冲液作20倍稀释,尿用蒸馏水作20倍稀释,后按表1-3操作。
表1-3NAG荧光测定法操作步骤
加入物测定管(U)空白管(B)
已稀释样品(ml)0.1
不含BSA缓冲液(ml)0.1
底物缓冲液(ml)0.20.2
混匀,37℃水浴15min
中止缓冲液(ml)3.O3.O
混匀各管,激发波长364nm,发射波长448nm,以中止液调零,6μmol/L4-MU管调荧光强度至100后,分别测空白管及测定管的荧光强度。
根据需要,也可用3μmol/L4-MU管调荧光强度至100。
2.标准曲线的制作取300μmol/L4-MU0.5ml,以中止液稀释至25ml,得6μmol/L应用液。
再按表1-4操作。
表1-4NAG荧光测定法标准曲线制作表
加入物
管号
6μmol/L4-MU(ml)
中止液(ml)
相当于4-MU浓度(μmol/L)
按上述波长,用中止液调零,6号管调100,读取各管荧光强度,在坐标纸上作标准曲线,应为直线。
单位定义:
1L样品中的被测酶,37℃1min催化水解1μmol底物,产生1μmol4-MU为1个单位浓度(U/L)。
为避免尿液浓缩或稀释的影响,以同一份尿中的肌酐值校正酶活性(NAG,U/gCre)。
【计算】
NAGU/L=
×
20×
=(FU-FB)×
2.64
式中FU代表测定管荧光强度,FB代表空白管荧光强度,15为酶促反应时间(min),3.3为反应液总体积(ml),0.1为所用稀释样品体积(ml),20为样品稀释倍数,6及100为6μmol/L4-MU之荧光强度100。
尿中NAG的U/L被尿中肌酐的g/L除,所得商为U/gCre。
【参考范围】9.94士2.07U/L。
1.本法酶促反应液中各成分浓度为:
底物1.33mmol/L,枸橼酸20mmol/L,Na2HP0432mmol/L。
2.配试剂所用蒸馏水应是重蒸馏水。
底物应无游离的4-MU,如有,可用丙酮提去。
BSA中应无该酶,如有应50℃加热2h灭活。
3.血清中NAG于4℃稳定数小时到数天,-20℃可稳定数月。
尿标本4℃稳定1周。
4.除服用能产生荧光的药物外,一般标本不作标本空白(对照管)。
【临床意义】
1.尿NAG活性增高是肾小管损害的较敏感指标,增高见于急慢性肾炎、休克引起的肾功能衰竭(特高)、肾病综合征、流行性出血热、中毒性肾病。
肾病恢复期或肾实质病变不重时,增加不明显。
下泌尿系统感染和尿路结石,尿酶可正常。
肾移植患者,尿NAG测定可早期发现排斥反应,一般在临床出现各种指征前1~3天即有尿NAG增高。
2.肝硬变和慢性活动性肝炎晚期,肝组织有纤维化倾向者,血清NAG升高;
中晚期妊娠,血清中NAG活性亦增高。
实验4原子吸收分光光度法测定血浆锌的含量
原子吸收分光光度分析是基于元素所产生的原子蒸气中,待测元素的基态原子,对所发射的特征谱线具有吸收作用,其吸收规律遵循Beer定律,即在一定条件下,原子吸收值与该物质的含量成正比。
原子吸收分光光度分析是一种吸收光谱的技术,使用的仪器为原子吸收分光光度计。
【原理】锌的空心阴极灯发射213.8nm谱线,通过火焰进入分光系统照射到检测器上。
血清用去离子水稀释,吸入原子化器(火焰),锌在高温下离解成锌原子蒸气。
部分发射光被蒸气中基态锌原子吸收,光吸收的量与火焰中锌离子的浓度成正比。
在使用锐线光源和稀溶液的情况下,基态原子蒸气对共振线的吸收符合Beer定律:
A=lg(I0/I)=KLN0
式中A为吸光度,I0为入射光强度,I为经原子蒸气吸收后的投射光强度,K为吸收系数,L为辐射光所穿过的原子蒸气的长度,N0为基态原子密度。
在锌原子蒸气中,待测锌元素的基态原子数与它对213.8nm波长的能量吸收成正比。
在血浆锌被原子化、火焰的绝对温度低于300OK时,可以认为锌原子蒸气中锌基态原子的数目实际上接近或等于锌原子总数,在固定的实验条件下,锌原子总数与血浆锌浓度(C)的比例是一定的。
因此,上式可写成:
A=KC
这是原子吸收分光光度法进行血浆锌定量分析的基本公式。
实验中使用火焰法,将血浆锌原子化,采用校正曲线定量。
1.甘油液稀释液50ml/L(V/V)甘油。
2.锌标准贮存液(15.3mmol/L)取浓硝酸10ml,加入至去离子水50ml中。
准确称取纯锌粉1.0g,溶于此溶液中,待溶解后,用去离子水定容至1000ml。
室温可稳定保存一年。
3.锌标准中间液(153μmol/L)准确吸取锌标准贮存液l.0ml加入100ml容量瓶内,用去离子水定容,临用前配制。
4.锌标准应用液(3.82、7.65、15.3、30.6μmol/L)分别吸取10mg/L在4个100ml容量瓶中加入锌标准中间液2.5、5.0、10.0、20.0ml,并用去离子水定容,临用前配制。
5.1.53mol/L三氯醋酸称取三氯醋酸25g溶解于去离子水中,稀释至100ml,室温稳定一年。
1.稀释血清吸取血清和质控血清各0.5ml于聚乙烯塑料试管内,加去离子水2.0ml,混匀,备用。
2.调节原子吸收分光光度计至波长213.8nm;
狭缝宽度0.7nm。
火焰为空气-乙炔,因使用仪器的型号较多,调节方法也不完全相同。
请按各仪器的说明书来调气压、流速、标本吸入速度、灯电流、灯位置,使达到最大灵敏度。
3.测定与结果计算
(1)吸入甘油稀释液进火焰,调基线,使吸光度为零。
(2)吸进从低浓度到高浓度的锌标准应用液,重复进样直至读出的吸光度稳定在±
0.002A,绘制标准曲线。
(3)吸进稀释血清和稀释质控血清,读取吸光度,然后从标准曲线查取锌浓度。
【参考范围】
血浆锌11.6~23.0μmol/L;
尿锌2.3~18.3μmol/L;
脑脊液锌0.11~0.17μmol/L。
1.样品的吸入速度和火焰状态保持恒定是取得重复结果的重要环节。
为了保持雾化器的清洁,要定期吸进稀盐酸清洗。
燃烧头应放在非酸性清洁液浸泡,使用前彻底清洗,保持燃烧喷口的通畅和表面光滑。
2.操作全过程都要严格防止锌污染。
因橡胶制品含锌较高,故标本不宜与橡皮制品接触,容量瓶不可用橡皮筋栓系,去离子水不可用橡皮管引流。
如用橡皮吸球取试剂时,吸管口要塞以棉花,临床广泛用的胶布含氧化锌,要严防接触。
3.标本、去离子水、试剂应存放在聚乙烯制品的容器内,不可用玻璃容器。
4.测定锌的血标本最好用空腹血,由于红细胞含锌比血浆高5倍,故取血后立即分离血浆。
血凝固时,锌可从血小板释放,致使测定结果偏离。
故血浆锌的测定结果比血清更可靠。
标本应避免溶血,应及时测定。
1.血浆锌增高主要见于工业污染引起的急性锌中毒。
也见于创伤、溶血性贫血、红细胞增多症、嗜酸性粒细胞增多症和甲状腺功能亢进等疾病。
2.血浆锌降低常见于酒精中毒等肝硬化、原发性肝癌、慢性活动性肝炎、胃肠吸收障碍、慢性肾病以及其他慢性消耗性疾病。
亦见于镰形细胞贫血、心肌梗死等患者。
血浆锌降低,可出现生长迟缓,男性生殖功能低下,食欲减退,昏睡,伤口愈合迟缓等临床表现。
严重缺锌时可导致腹泻、脱发、神志紊乱及反复感染等现象。
3.铜/锌比值一般为1.09±
0.36。
除慢性迁延性肝炎外,各型肝炎都明显高于参考范围,某些肿瘤、糖尿病、皮肤病、肺心病患者的血清铜/锌比值都高于参考范围。
冠心病铜/锌比值降低。
(钱士匀)
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