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3“反应”应大致呈正态分布。
最小剂量组的死亡率(Pn)应为0%,最大剂量组的死亡率(Pm)应为100%;
如果Pn<
20%或Pm>
80%需用校正公式计算;
如Pn>
20%或Pm<
80%则不能用此法计算。
[步骤]
1预备实验
(1)摸索上下限:
即用少量动物逐步摸索出使全部动物死亡的最小剂量(Dm)和一个动物也不死亡的最大剂量(Dn)。
方法是据经验或文献定出一个估计量,观察2~3只动物的死亡情况。
如全死,则降低剂量;
如全不死,则加大剂量再行摸索,
直到找出Pm=100%和Pn=0%的剂量,此两量分别为上下限。
(2)确定组数,组距及各组剂量
①组数:
一般5~8组,可根据适宜的组距确定组数,如先确定5组,若组距过大,可再增加组数以缩小组距。
有时也可根据动物死亡情况来决定增减组数。
②组距:
指相邻两组剂量对数之差,常用“d”来表示。
D不宜过大,因过大可使标准误增大;
也不宜过小,因过小则组数增多,
各组间死亡率重叠造成实验动物的浪费。
组距大小主要取决于实验动物对被试因素的敏感性。
敏感性大者,死亡率随剂量增加(或减少)
而增加(或减少)的幅度大,组距可小些;
反之,敏感性小者,死亡率随剂量变化的幅度小,则组距应大些。
上下限之间的距离可作为
敏感性大小的标志。
距离大,说明敏感性小;
距离小,则说明敏感性大。
一般要求d应小于0.155,多在0.08~0.1之间。
③确定组距方法:
把上下限的剂量换算成对数值,设上限剂量的对数值为Xk,下限剂量的对数值为X1,组数为G,则:
d=(Xk-X1)/(G-1)
④确定各组剂量:
由X1逐次加d(或由Xk逐次减d),得出各组剂量的对数值,再分别查反对数,
即得出各组剂量(呈等比级数排列)。
.
(
3
)配制等比药液,并使每只动物在给药容量上相等(如
0.5ml/20g
)。
⒉正式实验
1
)实验动物的选择与分组
①选择原则:
可根据不同实验而选取动物,应选择对被试因素敏感的动物。
同时也应考虑动物来源,经济价值及操作简便等条件。
LD50
常用小白鼠进行实验来测得。
②分组原则:
每组动物数必须多于组数。
因为每组动物数如少于组数,就不能充分反映各组死亡率的差别。
(如共
8
组,
每组
10
只动物,高剂量三个组的死亡数分别为
6
、
9
,但如果每组只用
只动物,则高剂量三个组的死亡数可能都是
。
)
③分组方法:
见附录,实验对象分组法。
首先,按性别将动物雌雄分开或各半混合编组,然后按体重分群,再随机分组,为求使各组平均体重相等。
2
)给药、观察死亡数、求出死亡率
①给药途径:
可据不同药物及动物而定,小白鼠多用腹腔注射或灌胃法;
也可静脉注射。
②给药顺序:
宜采取间隔跳组方法
如共
7
组,先按
4
组顺序给药,然后逆行按
5
组的顺序给药。
这样可避免药物放置过久或动物饥饿造成的偏向性误差。
而且当第
组给药后,如第
组动物已经全死,则可省下第
组动物及
1
号药液。
如第
组已死亡,可补做第
组,争取做出
0
﹪死亡率的组来。
每只动物的给药容量可按个体体重或平均体重确定。
③观察时间:
直到动物不再因药物作用而死亡为止。
在观察期间应注意保证食、水、温度等生活条件,严防非被试因素引起的死亡。
最后将死亡情况及各种数据填入下表中。
计算表
组别
剂量
对数剂量
动物数
死亡数
死亡率
P
P-1
mg∕kg)
XinrP(r∕n)
∑
3.计算公式
①基本公式㏒LD50=XK-d(∑P-0.5)
式中:
XK死亡率为100﹪组的对数剂量
d对数组距
∑P各组死亡率之和
②校正公式
当Pm>
0.8或Pn<
0.2时可用下公式计算
3-Pm-Pn
㏒LD50=XK-d(∑P-─────)
4
③LD50=㏒-1㏒LD50,单位应换算成mg∕kg或g∕kg表示。
④95%可信限:
LD50±
4.5S㏒LD50.LD50
S㏒LD50=d√∑p(1-p)/(n-1)
S㏒LD50㏒LD50的标准误
P各组死亡率
n每组动物数
[测定LD50的原理及公式来源]
为了解LD50测定原理,首先需了解剂量与反应的关系。
某被试因素对动物的毒性也是一种反应,
其大小往往以其使动物致死的量表示。
致死量小说明毒性大,反之说明毒性小。
根据剂量与反应的关系,
可绘出剂量反应曲线(量效曲线)。
图中表示的是以死亡频数和死亡率为反应指标的质反应量效曲线,它们具有如
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